Шпаргалка по «Паразитологии»

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 15 Мая 2015 в 20:57, шпаргалка

Описание работы

1).Определение термина «паразитизм», инвазия, паразитология. Задачи ветеринарной паразитологии. Учение К.И. Скрябина о девастации. Паразитология - комплексная биологическая наука, всесторонне изучающая явление паразитизма.Инвазия– заражение организма каким-либо паразитом животного происхождения. Паразитизм - форма межвидовых отношений, при которых один вид (популяция) использует другой в качестве источника питания и среды обитания, нанося ему вред, но не уничтожая его, и возлагая на него частично, или полностью, функцию регуляции взаимоотношений с ок ружающей (внешней) средой.
Паразитология, в значительной степени, является экологической дисциплиной, так как предметом ее изучения служат взаимоотношения между паразитом и хозяином, их взаимовлияния и зависимости от факторов внешней среды.

Файлы: 1 файл

parazitologia_shpory (1).docx

— 183.62 Кб (Скачать файл)

1).Определение  термина «паразитизм», инвазия, паразитология. Задачи ветеринарной паразитологии. Учение К.И. Скрябина о девастации. Паразитология - комплексная биологическая наука, всесторонне изучающая явление паразитизма.Инвазия– заражение организма каким-либо паразитом животного происхождения. Паразитизм - форма межвидовых отношений, при которых один вид (популяция) использует другой в качестве источника питания и среды обитания, нанося ему вред, но не уничтожая его, и возлагая на него частично, или полностью, функцию регуляции взаимоотношений с ок ружающей (внешней) средой. 
Паразитология, в значительной степени, является экологической дисциплиной, так как предметом ее изучения служат взаимоотношения между паразитом и хозяином, их взаимовлияния и зависимости от факторов внешней среды. Основатель экологи ческой паразитологии - В. А. Догель. Однако паразитология отличается от экологии свободноживущих организмов, так как для паразита выделяется среда I порядка - организм хозяина и среда II порядка - внешняя среда. Задачи ветеринарной паразитологии - С каждым годом в стране повышается удельный вес продукции животноводства и птицеводства, вырабатываемой в специализированных хозяйствах промышленного типа. Одной из важнейших задач ветеринарной паразитологии является обеспечение на животноводческих комплексах и в спец-хозах благополучия по инвазионным болезням. С этой целью необходимо строго соблюдать технологические нормы я ветеринарно-санитарные правила, не допуская ввоза инвазированных животных.

При без подстилочном содержании скота в специализированных хозяйствах промышленного типа ежедневно образуется большое количество жидкого навоза, не поддающегося биотермическому обеззараживанию. Изыскание надежных и удобных для применения методов и средств дезинвазии навоза и очистки сточных вод - потенциального фактора передачи инвазионного начала - должно быть в центре внимания паразитологов и практических ветеринарных специалистов.Значительное количество инвазионных и инфекционных болезней животных отнесено к группе природноочаговых (распространенных в дикой природе). Раскрытие тайн природы и путей циркуляции возбудителей этой группы заразных болезней является актуальной задачей паразитологии.Известно, что жизнедеятельность и болезнетворное действие паразитов на организм хозяев в значительной степени определяется качественным (видовым) составом и взаимоотношением компонентов паразитоценоза (комплекс паразитических форм), а также взаимным влиянием паразитов и организма хозяина и воздействием па них факторов внешней среды. Поэтому для повышения эффективности противо-паразитарных мероприятий, проводимых в животноводческих хозяйствах, целесообразно не только описывать определенные паразотоценозы, но и раскрывать их сущность, устанавливать механизмы межвидовых и внутривидовых отношений между компонентами этих сообществ. Учение К.И. Скрябина о девастации. К. И. Скрябин в 1945 году выдвинул идею о всеобщем наступлении на гельминтозы. Понятию «девастация» (от лат. devastatio — опустошение, истребление) К. И. Скрябин дал такое определение: «Методы наступательной активной профилактики, направленные на истребление, уничтожение возбудителя заболевания на всех фазах его жизненного цикла всеми доступными способами механического, химического, физического и биологического воздействия».

2).Гельминтоскопия, гельминтоовоскопия (метод нативного мазка, метод соскоба с перианальных складок, метод Фюллеборна, метод Дарлинга, метод Щербовича, метод последовательных промываний). Методы гельминтоскопии. Гельминтоскопию применяют для обнаружения в исследуемом материале половозрелых и юных гельминтов или их фрагментов. Гельминты нередко отходят сами. А у цестод некоторых групп систематически отторгаются членики и фрагменты (отрезки) стробилы с яйцами и выделяются наружу. Исследуя фекалии животных невооруженным глазом можно заметить гельминтов или их фрагменты и членики, а иногда приходится использовать специальные методы исследования. Особое значение гельминтоскопия имеет при цестодозах, а также при диагностической дегельминтизации. целью обнаружения члеников имагинальных цестод осматривают свежие фекалии. У овец, северных оленей, телят, лошадей члеников цестод нетрудно заметить при обычном осмотре. В фекалиях ягнят и овец рано утром или после дневного отдыха находят членики мониезий, тизакиезий, аветеллин и стилезий. У плотоядных животных членики цестод из отряда тениата способны активно передвигаться во внешней среде. Поэтому необходимо осматривать свежие фекалии. Весьма характерны по форме членики огуречного цепня ( Dipylidium caninum ) паразитирующий у собак, лисиц, песцов, енотовидных собак, кошек и других плотоядных, а также у человека. Членики этого паразита внешне напоминают огуречные семена, их легко заметить в фекалиях, выделенных инвазированными животными. Из специальных методов гельминтоскопии практически прост и приемлем метод последовательного промывания. Методы гельминтоовоскопии Гельминтоовоскопия (от латинского ovum – яйцо, греческого skopeo – смотрю) объединяет группу методов исследования, с помощью которых выявляют яйца возбудителей гельминтозов. Предложено много методов овоскопии. Но не все они заслуживают практического внимания: одни сложны по технике выполнения, при исследовании другими требуется значительное время, третьи малоэффективны. В данной работе мы приведем только те методы, которые заслуживают практического внимания. Удельный вес яиц тяжелее обычной воды, вследствие этого яйца гельминтов, как более тяжелые частички вымываются из фекалий водой и оседают на дно сосуда с различной скоростью, в зависимости от удельного веса, Быстрее всего оседают яйца более крупного размера. В растворах же солей высокого удельного веса яйца гельминтов наоборот всплывают (явление флотации) в верхний слой и концентрируются в нем. На использовании этих физических закономерностей основала технология всех современных методов гельминтоовоскопии, которые подразделяются на три группы:а) Методы осаждения (седиментации) яиц гельминтов;б) Методы флотации яиц гельминтов;в) Комбинированные методы (осаждения и флотации) яиц гельминтов. Метод Фюллёборна Для этой методики нужен насыщенный раствор поваренной соли, который готовят путем кипячения 400-420 г соли на 1 л воды.Пробу фекалий весом 3 – 5 г помещают в стакан, заливают небольшим количеством флотационной жидкости, тщательно размешивают, затем добавляют 50-100 мл этого раствора и процеживают через металлическое сито или марлю в один спой в сухой, чистый стакан. Взвесь отстаивают 40-60 мин., затем прикосновением петли снимают поверхностную пленку, переносят ее на предметное стекло для микроскопирования. Этот метод в отечественной лабораторной практике может применяться для диагностики аскаридоза, стронгилятозов и стронгилоидоза свиней, неоаскаридоза, стронгилятозов стронгилоидозов, мониезиоза,. тизанизиоза, жвачных, параскаридоза, стронгилятозов кишечника лошадей Плотность насыщенного раствора поваренной соли невысокая - 1,18-1,20. Тогда как удельный вес яиц аскариса равен 1,10-1,14 : а у неоплодотворенных яиц - 1,26, а трихоцефалюса - 1,16-1,22. Поэтому насыщенный раствор поваренной соли способен флотировать только масть яиц аскарид и трихоцефалюсов, по этой причине диагностическая эффективность данной методики невысокая. Кроме того, раствор на предметном стекле быстро кристаллизуется. Метод соскоба с перианальных складок Эту методику применяют для диагностики оксиуроза лошадей и пассалуроза кроликов. Из деревянной палочки или щепочки делают лопаточки (можно и спички), смачивают смесью глицерина с водой (1:1) и делают соскоб с перианальных складок с внутренней стороны хвоста в области промежности. Соскоб переносят на предметное стекло с указанной смесью, накрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом. Метод последовательного промывания При проведения этого метода собирают свежие порции фекалий от животных, их кладут в сосуд, заливают водой в соотношении 1:5 и 1:10, тщательно перемешивают. Взвесь оставляют на 5 мин. для осаждения. Затем верхний слой сливают до осадка, после чего снова заливают водой и повторяют эти операции до тех пор, пока жидкость над осадком не будет прозрачной. После надосадочную жидкость сливают последний раз, а осадок помещают в кювет или чашку Петри для исследования под лупой. Так как одни гельминты хорошо видны на белом фоне, а другие на черном, то для более полной выборки гельминтов чашку Петри ставят то на белую, то на черную бумагу. Гельминты выбирают препаровальной иглой или кисточкой, а затем микроскопируют для установления вида, при этом пользуются ручной, а также штативной лупой или стереоскопическим микроскопом. В качестве флотационных жидкостей автором предложены три раствора из насыщенных солей: нитрата натрия, сульфата магния и тиосульфата натрия. Метод Щербовича.Пробу фекалий величиной с грецкий орех кладут в стакан, добавляют 40-60 мл воды и тщательно размешивают до появления равномерной взвеси. При постоянном помешивании взвесь процеживают через металлическое сито или марлю в чистый стакан. После 5 минутного отстаивания надосадачную жидкость сливают. На дне оставляют такое количество взвеси, которое бы вместилось в центрифужную пробирку и центрифугируют 1-2 мин. Метод Дарлинга. Пробу фекалий весом 3-5 г помещают в химическим стаканчик и тщательно размешивают с 18-20 мл воды, процеживают через сито в другой стаканчик, полученную жидкость переливают в центрифужную пробирку и центрифугируют в течение 1-2 мин. при 3000 об/мин. Затем надосадочную жидкость сливают, а к осадку добавляют флотационную жидкость, состоящую из равных частей глицерина и насыщенного раствора хлорида натрия. Плотность такой жидкости равна 1,205 при 18°С Содержимое взбалтывают и вновь центрифугируют в том же режиме при этом яйца всплывают, их снимают проволочной петлей с поверхностной пленки и микроскопируют на предметном стекле. Этот метод применяют для диагностики аскаридатозов и других нематодозов у животных Метод нативного мазка. На обезжиренное предметное стекло наносят каплю 50%-ного глицерина или воды, затем палочкой или спичкой берут небольшое количество фекашлий из различных участков пробы, вносят в эту каплю и тщательно перемешивают до получения равномерной эмульсии. Твердые частицы из капли удаляют, каплю раздавливают покров стеклом и исследуют под микроскопом при малом увеличением.  Исследовать надо не менее 10 мазков из каждой пробы.

3) Гельминтолярвоскопия (метод Бермана, метод Вайда, метод диагностики стронгилятозов по инвазионным личинкам). Ларвоскопия (от лат. larva - личинка, греч. skopeo - смотрю) - совокупность приемов обработки и исследования проб материала с целью выявления личинок гельминтов и установления по ним возбудителя. Гельминтоларвоскопию применяют для диагностики диктиокаулеза и протостронгилидозов жвачных, стронгилятозов. и стронгилоидоза у сельскохозяйственных животных. Метод Вайда. Эта методика очень проста и применяется для диагностики диктиокаулезов жвачных, протостронгилеза, мюллериоза и цистокаулеза овец и коз. На предметное или часовое стекло кладут несколько шариков свежевыделенных фекалий овец и коз и добавляют небольшое количество воды (температура около 40°С). Если шарики помещают на предметное стекло, то достаточно несколько капель воды. Через 40 мин. шарики удаляют, оставшуюся жидкость на стекле микроскопируют на наличие личинок нематод.  метод диагностики стронгилятозов по инвазионным личинкам. Стронгилятозы домашних животных в большинстве своем не диагностируются методами гелльминтоовоско-пии, так как выделяемые их возбудителями яйца нельзя отличить друг от друга. В то же время инвазионные личинки этих же возбудителей позволяют легко дифференцировать один род от другого, а иногда и виды. Поэтому для диагностики стронгилятозов лошадей (делафондиоз, альфортиоз, стронгилез и др.) и стронгилятозов жвачных (гемон-хоз, эзофагостомоз, буностомоз, хабертиоз и др.) необходимо из яиц вырастить инвазионных личинок и на основании их анатомо-морфологических особенностей поставить уже точный диагноз.Подлежащие исследованию фекалии помещают в стеклянный сосуд (стакан, материальная банка) и выдерживают при ежедневном увлажнении 7-10 дней в термостате при температуре 25-30°. По истечении этого срока фекалии исследуют по методу Бермана на узкий конец стеклянной воронки надевают резиновую трубку с зажимом и укрепляют ее на металлическом штативе. В воронку помещают металлическую сетку, па которой находится 5—10 г кала. Приподняв сетку, заполняют воронку подогретой до 40—50 °С водой таким образом, чтобы нижняя часть сетки с калом была погружена в воду. Личинки из кала активно переходят в теплую воду и скапливаются в нижней части резиновой трубки, надетой на воронку. Через 4 ч зажим на трубке открывают и спускают жидкость в одну-две центрифужные пробирки. После центрифугирования в течение 2—3 мин надосадочную жидкость быстро сливают, а осадок переносят на предметное стекло и исследуют под микроскопом. В осадке отыскивают личинки стронгилоида. Исследование проводят при подозрении на стронгилоидоз.

 

4. Анатомия и биология трематод (нервная система, выделительная система и т.д.).

Анатомия и биология трематод. Это плоские черви листовидной формы. Тело обычно удлиненно-овальное, размером от 1 мм до 15 см. Оно покрыто тегументом (гладкое, с шипами или с щетинками), состоящим из наружного и внутреннего слоев (рис. 61). У большинства трематод две присоски: ротовая (на переднем конце тела) и брюшная (чаще на середине тела). У некоторых трематод, например у представителей Бап шшсоШае, паразитирующих в крови рыб, присоски рудиментированы или отсутствуют. От ротового отверстия отходит глотка, затем пищевод, переходящий в кишечник. Последний в виде двух стволов, достигнув заднего конца тела, слепо заканчивается. В очень редких случаях кишечные стволы открываются наружу. Сосальщики питаются тканевой жидкостью, слизью, некоторые — кровью. Продукты обмена выделяются через экскреторную систему протонефридиального типа. По всему телу размещены канальцы, объединяющиеся в два выделительных канала, открывающихся на заднем конце тела.

Вызывается этот гельминтоз нематодой Chabertia ovina, относящейся к семейству Strongylidae и паразитирующей в толстом отделе кишечника овцы, козы, крупного рогатого скота, оленя, лани, безоарового козла, тура. Как заболевание хабертиоз описан пока только у овец, у которых он протекает в форме энзоотии.

5. Фасциолез крупного рогатого скота (цикл развития, описание возбудителя, патогенез, лечение)

Фасциолез —   остро и хронически протекающее трематодозное заболевание домашних и диких партнокопытных, зооноз, характеризуется снижением продуктивности, отеками, анемией, нарушением работы органов пищеварительного тракта.   

 Возбудитель—  трематоды фасциола обыкновенная— Fasciolahepaticaи фасциола гигантика F. gigantica.Паразитирует в желчных  протоках печени животного,  в желчном пузыре, питаясь кровью и тканями.  

Морфология Фасциола обыкновенная – печеночная двуустка в длину 2-3 см при ширине 1,5 см желто – серого цвета. Форма тела листовидная. Ротовая и брюшная присоски располагаются на переднем конце тела. Брюшная значительно крупнее ротовой, служит для фиксации. В глубине ротовой имеется фаринкс. От него отходят две пищеварительные трубки, имеющие ответвления. Расположенная за брюшной присоской матка – петлевидная, заполненная яйцами коричневого цвета. В центральной и задней части имеются семенники. Боковые пространства заполнены желточниками. Фасциола гигантика длиной до 8 см. имеет аналогичное строение. Яйца фасциол довольно крупные, элипсовидной формы, золотистого цвета. Оболочка двухконтурная, на верхнем полюсе имеется крышечка.

Биология Фасциолы являются биогельминтами, развиваются с участием двух хозяев – дефинитивного и промежуточного. Основной хозяин – жвачные. Промежуточные хозяева для фасциол – пресноводные моллюски, дляфасциолы обыкновенной – малый прудовик (Lymnaeatruncatula) для фасциолы гигантской  - прудовик ушковидный  - (L. Auricularia). Трематоды откладывают яйца, которые транзитом проходят через кишечник с фекалиями попадают во внешнюю среду. Во влажном субстрате при температуре 12-18 оС за 10-20 дней в яйце формируется личинка – мирацидий. Покинув яйцо мирацидий плавает в воде и натыкается на промежуточного хозяина, в котором и происходит его бесполое размножение, включающее следующие стадии: спороциста, редия, церкарий, на что уходит 2-2,5 месяца. Зрелые церкарии покидают тело моллюска, и плавая на поверхности воды быстро инцистируются, превращаясь в адолескарий. Адолескарии прикрепляются к траве, листьям водных растений постредством клейкого секрета. Сохраняются адолескаии на траве или в воде до окончания пастбищного сезона. Животные заражаются заглатывая цисты.   

В кишечнике трематоды освобождаются от цистных оболочек и мигрируют в желчные ходы через стенку кишечника, брюшную полость, капсулу и строму печени. Реже туда они попадают гематогенным путем. Миграция и развитие до половозрелой стадии занимают 3,5 – 4,5 месяца.

Патогенез Фасциолы нарушают циркуляцию крови в печени, разрушают ткань ее при миграции, а также заносят в печень микрофлору. Вызывают интоксикацию организма, нарушая работу ряда органов и систем. 

Клинические признаки и течение фасциолеза зависят от интенсивности инвазирования  животных, возраста, индивидуальных особенностей, условий кормления и содержания скота. Острое течение наблюдается в основном у молодняка при первичном заражении, вызывается молодыми фасциолами, мигрирующими через стенку кишечника, печень и другие органы. При этом наблюдается прогрессирующая бледность конъюнктивы и желтушность слизистых оболочек, лихорадка, потеря аппетита, тимпания, сильное угнетение, тахикардия, одышка, увеличение и болезненность печени, истощение, что часто заканчивается смертью. При хроническом течении фасциолеза признаки болезни сглаживаются, у животных отмечают угнетение, исхудание, отеки век, нижней части груди, подчелюстного пространства.

Диагноз Прижизненный диагноз на фасциолез ставится с учетом эпизоотологических, клинических данных и результатов гельминтокопроскопических  исследований. Метод последовательных промываний- самый простой, однако эффективность его не превышает 60%. Более эффективный метод Щербовича и флотация с раствором нитрата свинца. Получают распространение серологические и аллергические методы исследования. Посмертный диагноз ставят— на основании данных вскрытии и нахождения фасциол.

Лечение Для дегельминтизации при фасциолезе можно применять политрем, битионол, албендазол однократно в дозе 10 мг на кг, фазинекс, рафоксанид однократно в дозе 2,5 мг на кг, клозантел 2-3 мг на кг, ацимидофен в виде 10% - ной суспензии и другие антгельминтики.

 

6. Дикроцелиоз жвачных  (цикл развития, описание возбудителя, патогенез, лечение). 

Хронически протекающее заболевание мелкого и крупного рогатого скота, многих видов жвачных. Возбудители – мелкие трематоды семейства Dicrocoeliidae. Локализация  - желчные ходы печени. Может заражаться и человек.

Возбудитель Морфология Дикроцелиумы  - мелкие трематоды. В нашей стране у животных паразитирует один вид  - Dicrocoeliumlanceatum. Тело паразита продолговатое, зауженное с двух концов, темно – серого цвета. Характерный признак возбудителя – темно-коричневые петли матки занимают заднюю половину тела, а два округлых семенника, расположеные наискось, находятся в передней части тела. Непарный округлый яичник расположен позади семенников. Длина тела 8…10 мм, ширина 1,5 …2мм.  

Информация о работе Шпаргалка по «Паразитологии»