Гель хроматография

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 17 Мая 2012 в 18:38, дипломная работа

Описание работы

Углеводы - один из основных компонентов клеток и тканей живых организмов, обеспечивают все живые клетки энергией (глюкоза и ее запасные формы - крахмал, гликоген), участвуют в защитных реакциях организма (иммунитет). Из пищевых продуктов наиболее богаты углеводами овощи, фрукты, мучные изделия (крупы, овощи, фрукты и бобовые). Пища человека состоит примерно на 70 % из углеводов. Углеводы входят в состав лекарственных препаратов (гепарин, сердечные гликозиды, некоторые антибиотики). Повышенное содержание некоторых углеводов в крови и моче служит важным диагностическим признаком отдельных заболеваний (сахарный диабет). Суточная потребность человека в углеводах составляет 400-450 г.

Содержание работы

Введение 4
1 Литературный обзор 6
1.1 Свойства углеводов 6
1.2 Методы анализа и разделения углеводов 9
1.2.1 Гель-хроматография 9
1.2.2 Распределительная хроматография на ионообменных смолах 21
1.2.3 Хроматография на бумаге 28
1.2.4 Газожидкостная хроматография триметилсилильных
производных сахаров 29
1.2.5 Газожидкостная хроматография метиллированых сахаров 29
2 Экспериментальная часть 32
3 Безопасность жизнедеятельности 54
Заключение 60
Cписок используемых источников 61

Файлы: 1 файл

Диплом кириллиной.doc

— 1.35 Мб (Скачать файл)

    В качестве жёстких гелей обычно применяются пористый силикагель (порасил), пористые стёкла с контролируемым размером пор и аэросилогели- синтетические макропористые кремнеземы с жёсткой пористой структурой и однородным размером пор. Аэросилогели отличаются высокой степенью химической чистоты и отсутствием каталитического воздействия на хроматографируемые вещества.

    Большое значение имеют сорбенты на основе пористого стекла с привитыми углеводами. Они сочетают гидрофильный характер поверхности с высокой механической прочностью и предназначаются для разделения методом гель - хроматографии смесей высокомолекулярных соединений в водных растворах.

   При выборе растворителя, главное требование к растворителям, применяемым в гель-хроматографии, заключается в способности его растворять все исследуемые соединения смеси, смачивать поверхность его зёрен. При анализе поливиниловых спиртов в качестве подвижной фазы часто используют тетрагидрофуран, при анализе полиэлектролитов- воду .

   Для мягких гелей растворитель должен способствовать их набуханию. В идеальном случае растворитель, заполняющий поры геля и пространство между зёрнами геля, должен одинаково взаимодействовать с молекулами хроматографируемых веществ. Тогда перемещение растворённых веществ в поры происходит только за счёт диффузии.

    Не маловажное значение имеет вязкость растворителя, с которой связана скорость массообмена. Особенно низкой должна быть вязкость растворителя для растворов высокомолекулярных соединений, обладающих малым значением коэффициента диффузии.

    Выбор растворителя в гель-хроматографии зависит также от применяемой системы детектирования. Если детектором служит дифференциальный рефрактометр, целесообразно в качестве растворителей применять толуол, трихлорбензол, м-крезол, т.е. вещества с высоким показателем преломления. При использовании ультрафиолетового детектора эти растворители непригодны, их заменяют хлороформом или четырёххлористым углеродом.

    Роль солей, присутствующих в анализируемом растворе, также приходится учитывать, так как некоторые полимерные вещества могут изменять размеры своих молекул при наличии в растворе электролитов. Кроме того, электролит может оказывать влияние на набухаемость мягких гелей и изменять размеры их пор.

    Наиболее часто применяемыми в гель-хроматографии растворителями наряду с водой являются N,N′-диметилформамид, хлороформ, четырёххлористый углерод, 1,1,2,2-тетрахлорэтан, толуол, 1,2,4-трихлорбензол, м-крезол, тетрагидрофуран и др. [13].

Для детектирования могут использоваться детекторы различных типов, применяемые в жидкостной хроматографии - рефрактометрические, фотометрические (в УФ- или ИК-области) и др., сигнал которых пропорционален концентрации растворённого вещества.

   Специфическим типом детекторов для анализа высокомолекулярных соединений являются вискозиметры. Они измеряют вязкость протекающего через них элюента. В присутствии высокомолекулярных веществ вязкость раствора возрастает, что регистрируется на хроматограмме в форме пика .

    В гель хроматографии все возможные значения удерживаемых объёмов укладываются в точно определённый интервал между V0 и V0+Vр, где V0 –мёртвый объём колонки ,(объём межзёрного пространства), Vр –суммарный объём пор. Поэтому данный метод характеризуется небольшими временами удерживания, определяемыми значениями коэффициента распределения К. Пики на гель - хроматограммах обычно достаточно узкие и хорошо воспроизводимые. Ввиду, того что вещество не претерпевает в ходе хроматографического процесса никаких химических взаимодействий, она выходит из колонки  в неизменном виде и без потерь. Поэтому гель-хроматографию можно использовать и в препаративных целях. С другой стороны, и вещество не оказывает никакого взаимодействия на колонку, что нередко наблюдается в других видах хроматографии[14].

 

1.2.2 Распределительная хроматография на ионообменных смолах

 

 

Впервые разделение углеводов методом распределительной хроматографии на ионообменных смолах в смесях растворителей различной полярности было описано в 1952 г. В последние годы метод был значительно усовершенствован. В качестве элюента при разделении сахаров и их производных наиболее пригоден водный спирт, и далее речь будет идти только об этом элюенте.

Одним из основных факторов, обусловливающих сорбцию сахаров точно так же, как и других полярных неэлектролитов в данном виде хроматографии, является неодинаковое распределение компонентов элюирующей смеси между смолой и внешним раствором. В случае водного спирта относительное количество воды в неподвижной фазе выше, чем в подвижной, и этим объясняется тот факт, что смолой преимущественно удерживаются полярные вещества. На состав подвижной и неподвижной фаз существенное влияние оказывает также взаимодействие смола - растворитель и смола - растворенное вещество. При смене противоиона порядок элюирования некоторых сахаров может измениться.

Коэффициенты распределения веществ возрастают с увеличением концентрации спирта и уменьшаются с повышением температуры. За редким исключением, коэффициенты распределения растут с увеличением числа гидроксильных групп в молекуле. Введение в молекулу неполярных групп, например метильных, приводит к уменьшению коэффициента распределения. Величина последнего зависит также от положения заместителей.

В таблице 1 приведены коэффициенты распределения ряда свободных сахаров.

Распределительная хроматография на ионообменных смолах была с успехом применена для разделения моно- и олигосахаридов, альдитов и производных сахаров, не содержащих ионогенных группировок, например гликозидов и частично метилированных сахаров. Этот метод можно использовать как в аналитических, так и в препаративных целях.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 1 - Коэффициенты объемного распределения (Dv) некоторых моносахаридов и ангидросахаров при различных температурах и концентрациях спирта

 

 

 

Сахара

Пористая смола (SO42-)

75 °С

Смола малой

емкости (SO42-)

75 °С

Дауэкс (SO42-)

90°С

Дауэкс (Li+)

75 °С

Амберлит IR-120 (Li+)

75 °С

100 °С

                                     Концентрация этанола, %

 

 

88

86

90

86

92,4

92,4

Эритроза

3,08

 

 

 

1,9

 

 

Треоза

3,84

 

 

 

1,4

 

 

Рибоза

6,55

4,06

5,80

4,98

 

4,0

3,1

Арабиноза

10,1

6,26

9,79

7,56

 

3,8

3,0

Ксилоза

12,5

7,38

12,1

9,19

2,7

3,0

2,4

Фруктоза

13,5

8,04

13,8

10,3

 

5,6

4,3

Сорбоза

 

8,93

15,6

11,0

 

4,6

3,7

Манноза

16,4

9,37

16,9

11,8

 

5,3

4,4

Галактоза

23,4

13,0

24,4

16,1

5 7

6,8

5,3

Глюкоза

28,1

14,9

29,5

19,5

4 8

5,4

4,4

Альтроза

16,6

 

 

 

4 2

 

 

Рамноза

4,75

2,80

4,11

3,54

 

1.4

1,2

Фукоза

 

3,25

4,96

4,19

 

2,4

1,8

 

На рисунке 6 приведена принципиальная схема прибора, используемого для разделения сахаров. Элюент (спирт — вода) помещают в колбу Мариотта и обезгаживают кипячением, чтобы предотвратить появление пузырьков воздуха в колонке. За колбой расположена открытая градуированная трубка, обычно заполненная элюентом. Скорость движения элюента в системе регулируют, перекрывая выходное отверстие колбы. Элюент подается в колонку поршневым насосом из нержавеющей стали который помещают ниже остальных аппаратов системы элюирования..

 

Рисунок 6 - Аппаратура для проведения хроматографического разделения и автоматического анализа сахаров

 

Давление измеряют манометром Бурдона, снабжённым прерывателем. Последний отключает насос и нагреватель, если давление в системе превышает норму (80 атм) и также если оно падает из-за утечки жидкости. Анализ можно проводить на колонках, имеющих пористое дно и тефлоновое уплотнение на верхнем конце колонки. Если работа ведется при высоком давлении, не рекомендуется пользоваться колонками со стеклянными фланцами. Вместо них можно использовать стеклянные трубки с приклеенными эпоксидной смолой муфтами из поливинилхлорида [15].

Чтобы в колонке поддерживалась требуемая температура (70-90 °С), по рубашке колонки циркулирует вода из термостата. Повышение температуры колонки приводит к сужению зон вымываемых веществ и снижению рабочего давления.

Смолы, применяемые в распределительной хроматографии, представляют собой сильноосновные аниониты или сильнокислые катиониты, основу которых составляет сополимер стирола и дивинилбензол. В аналитических колонках, диаметр которых равен 2—6 мм, а скорости элюирования высокие, рекомендуется использовать мелкозернистые смолы с размером частиц 8—13 или 10—15 мкм. Для препаративнго разделения сахаров на широких колонках (диаметр 12—25 мм) и при меньшей скорости элюирования можно применять более грубые смолы.

Колонку промывают элюентом до тех пор, пока не образуется однородный слой ионита. После этого растворитель, находящийся над слоем смолы, отсасывают, в колонку переносят новую порцию суспензии и операцию повторяют. Перед хроматографическим разделением заполненную колонку приводят в состояние равновесия с элюентом данного состава, промывая ее элюентом не менее 16 ч.

Анализирующая система. Определение сахаров и их различных производных в элюате удобно проводить автоматически орциновым методом. Раствор реагентов хранят в бутыли из темного стекла, откуда он и подается в систему при помощи поршневого насоса. Между насосом и тройником, в котором происходит смешение элюата с раствором красителя, расположено устройство для гашения (демпфирования) пульсаций давления (рисунок 1). Смесь элюата с раствором красителя пропускают через змеевик длиной 20 м и диаметром 1,2 мм, погруженный в термостатируемую полигликолевую баню (100°С). Время нахождения смеси в змеевике около 10 мин. Интенсивность окраски раствора определяется спектрофотометрически при 420 нм проточных кюветах с l 2—15 мм. Удобно пользоваться системой из двух последовательно соединенных кювет разной длины: если на более длинной кювете самописец «зашкаливает», измерения проводят на более короткой кювете. На колонке диаметром 4 мм удается разделить и проанализировать от 2 до 20 мкг веществ. На колонках меньшего или большего диаметра можно проанализировать соответственно меньшее или большее количество смеси.

Достоинством вышеописанной схемы анализа является высокая точность количественного определения и отсутствие необходимости в частом построении калибровочных кривых (при постоянстве условий анализа). Если удается достичь полного разделения компонентов, отклонение от среднего значения в двух аналогичных анализах составляет менее 1%. Однако весь элюат расходуется за одно определение, и потому не удается провести дополнительное исследование фракций.

Если проводится препаративное разделение или если проводимые исследования требуют повторного разделения и дополнительных анализов компонентов смеси, то для разделения потока элюата и введения растворов реагентов следует использовать перистальтический насос. Такая схема анализа (рисунок 6) отличается большей гибкостью, однако недостатком ее является более низкая точность количественных определений в связи с тем, что соединительные трубки насоса быстро изнашиваются и их приходится менять через 14 дней.

М- сместители; Р1 и Р2 – гасители пульсации; L – флуоресцентная лампа трубки; А – орционный канал: 16-ти % водный раствор орциона, 60% серная кислота; В – периодат-формальгидный канал

 

Рисунок 7 - Двухканальный анализатор для одновременного определения восстанавливающих сахаров и альдитов

 

На рисунке 7 приведена схема анализа с применением перистальтического насоса. Элюат делится на три потока и одновременно анализируется орциновым (А) и периодат-формальдегидным (В) методами. Третий поток подается на коллектор фракций или отбрасывается. В элюате дополнительно определяют содержание восстанавливающих сахаров периодатным или феррицианидным методом. Выделенные ациклические альдиты анализируются автоматически периодат-формальдегидным методом. В кислой среде они окисляются периодатом с образованием формальдегида, который определяют до реакции с пентандионом-2,4 в растворе ацетата аммония. Избыток периодата предварительно восстанавливают арсенитом. В условиях анализа при окислении большинства альдитов образуется с высоким выходом формальдегид, в то время как при окислении большей части альдоз формальдегид образуется лишь в незначительных, с трудом детектируемых количествах. Исключение составляет D-фруктоза, ее можно достаточно точно определить этим методом. Периодат-формальдегидегидный метод в совокупности с орциновым используется для анализа сложных смесей сахаров и альдитов. Точность его сравнима с точностью орцинового метода [16].

 

1.2.3 Хроматография на бумаге

 

В последнее время хроматографию на бумаге все чаще начинают использовать в качестве самостоятельного количественного метода. При этом весьма широкое распространение получает количественная хроматография углеводов: моно-, ди- и олигосахаридов, а также продуктов гидролиза крахмала, целлюлозы и других полимеров. Количественное определение индивидуальных веществ, разделяемых на хроматограммах, производится различными способами. Существует ряд методов, при помощи которых можно определить концентрацию разделенных веществ непосредственно на бумаге. Это методы: визуальное сравнение (полуколичественный), измерение площади пятен, измерение интенсивности окраски пятен, определение максимальной плотности окраски пятен. В случае работы с радиоактивными веществами можно легко установить активность этих соединений при помощи счетчика Гейгера — Мюллера.

Информация о работе Гель хроматография