Методы стерилизации

Кроме того, используя постоянно  периодический контроль в практике работы ЦСО, существенно облегчается  анализ причин неэффективности стерилизации. Это, в свою очередь, позволяет установить, что эти причины являются результатом ряда скрытых факторов, которые действуют отдельно или в сочетании друг с другом (техническая неисправность оборудования, несоблюдение технологии проведения стерилизации, ошибки персонала, в том числе и при проведении контрольных мероприятий и так далее) [

А самое главное, этот анализ можно осуществить собственными силами специалистов ЦСО без привлечения  сторонних организаций, что, в итоге  позволяет существенно экономить  денежные средства ЛПУ. Еще одним  важным аспектом использования биологических  индикаторов является возможность  их применения на всех существующих режимах  стерилизации. А к ним можно  отнести российские классические режимы автоклавирования и воздушной стерилизации, так называемые импортные «короткие» режимы паровой стерилизации, стерилизации лекарственных сред, а также режимы обеззараживания (так называемые «режимы убивки») и обработки в дезинфекционных камерах. Рассмотрим подробно все возможные режимы стерилизации, где необходимо осуществлять биологический контроль.

• Стерилизация растворов лекарственных сред в автоклавах. Стерилизационные режимы: 112°С с временной выдержкой от 8 минут и более; 120°С с временной выдержкой от 10 минут и более.
• Паровая стерилизация (автоклавирование). Стерилизационные режимы: 110°/180м; 120°/45м; 121°/20м; 126°/10м; 132°/20м; 134°/5м.
• Воздушная стерилизация. Стерилизационные режимы: 160°/150м; 180°/60м.
• Паровая стерилизация (автоклавирование). Режимы обеззараживания 110°/45м; 120°/30м; 120°/60м; 126°/45м; 126°/60м; 132°/45м; 132°/60м; 132°/90м.
• Режимы обработки для дезинфекционных камер.
• Режимы пароформалиновой дезинфекции: 58°/45м; 50°/150м; 58°/60м; 58°/210м; 126°/60м; 132°/45м; 132°/60м; 132°/90м.
• Режимы паровой дезинфекции: 100°/30м; 100°/60м; 108°/40м.
• Плазменная и газовая (окись этилена, озон) стерилизация.

8.Контроль стерильности изделий медицинского назначения

Проводят путем взятия смывов на стерильность и посев на питательную среду.

Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий целиком (при их небольших  размерах) или в виде отдельных  деталей (разъемные изделия) и фрагментов (отрезанные стерильными ножницами  кусочки шовного, перевязочного  материала и т.п.) в питательные  среды. Объем питательной среды  в пробирке (колбе, флаконе) должен быть достаточным для полного погружения изделия (деталей или фрагментов изделия). При проверке стерильности более крупных изделий проводят отбор проб методом смывов с различных  участков поверхности изделий: с  помощью стерильного пинцета (корнцанга) каждый участок тщательно протирают  марлевой салфеткой (размер салфетки 5.5 см), увлажненной стерильной питьевой водой или стерильным 0,9 % раствором  хлорида натрия, или раствором  нейтрализатора (при стерилизации раствором  химического средства). Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с  питательной средой. У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец опускают в пробирку с питательной средой и с помощью стерильного шприца или пипетки 1 - 2 раза промывают Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 32 °C, посевы в среду Сабуро - при температуре 20 - 22 °C в течение 14 суток при контроле изделий, простерилизованных растворами химических средств и газовым методом, в течение 7 суток - простерилизованных термическими (паровой, воздушный) методами. При отсутствии роста микроорганизмов во всех пробирках (колбах, флаконах) делают заключение о стерильности изделий.

Заключение:

Подводя итоги, следует отметить следующее. Уничтожение микроорганизмов  физическими и химическими методами, которые используются при стерилизации медицинских изделий, подчиняется  экспоненциальному закону. Это означает, что неизбежно имеется конечная вероятность того, что микроорганизм  может выживать независимо от степени  проведенной обработки. Для конкретной обработки вероятность выживания  определена количеством и типами микроорганизмов и условиями  их существования до и во время обработки. Следовательно, стерильность любого изделия в ряду изделий, подвергнутых стерилизации, может выражаться только в терминах вероятности существования нестерильного изделия.

Применение  современных стерилизантов, тепловая и холодная стерилизация гибкого инструментария после каждого исследования позволяют достигать высокого уровня дезинфекции и стерильности аппаратуры.

В качестве стерилизантов используют насыщенный высокотемпературный водяной пар (стерилизация паром), сухой горячий воздух (стерилизация жаром), химические вещества (стерилизация химическая), газ (стерилизация газовая), реже используют ионизирующие излучения (лучевая стерилизация), фильтрование через мелкопористые фильтры (механическая стерилизация), многократное прогревание жидкостей на водяной бане при 100 0С (дробная стерилизация) или 56 0С (тиндализация).

Список литературы

1. «МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ДЕЗИНФЕКЦИИ, ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКЕ И СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ» от 30 ДЕКАБРЯ 1998 г № МУ-287-113
2. ОСТ 42-21-2-85 «СТЕРИЛИЗАЦИЯ И ДЕЗИНФЕКЦИЯ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ».
3. Буянов В.М., Нестеренко Ю.А. Хирургия.- М.: Медицина, 1990. – с 20 – 29.
4. http://steriliz.narod.ru/index.htm
5. Справочник. Сестринское дело. Серия «Медицина для вас». Ростов н/Д: «Феникс», 2003 – с 58 – 63.

Размещено на Allbest.ru