Диагностика и методы лечения алиментарных гастроэнтеритов собак в клинике «Ваш ветеринар»
Научная работа, 30 Ноября 2014, автор: пользователь скрыл имя
Описание работы
Целью настоящих исследований явилось изучение этиологии, некоторых вопросов патогенеза, клинико-морфологических изменений, оценка методов диагностики и способов комплексного лечения собак, больных гастроэнтеритом.
В связи с этим в задачи наших исследований входило:
- выяснить степень распространения и этиологию гастроэнтеритов у собак в условиях г. Новокузнецка;
-познакомиться с методами лабораторной диагностики гастроэнтеритов;
-изучить схемы лечения собак, больных гастроэнтеритами, с учетом течения заболевания.
Содержание работы
Введение 3
1. Литературный обзор 4
1.1. Этиология гастроэнтеритов 5
1.2. Патогенез 7
1.3. Клиническая картина и течение заболевания 10
1.3.1. Заболевания тонкого кишечника 13
1.3.2. Заболевания толстого кишечника 16
1.4. Диагностика и дифференциальная диагностика 17
1.3.2. Диагностическое значение анорексии, рвоты, регургитации, дисфагии, слюнотечения 17
1.4.2. Основные клинические критерии дифферен¬циальной диагностики тонко- и толстокишечных диарей 20
1.5. Основные принципы лечения диарей 21
2. Собственная работа 26
2.1. Материалы и методы исследования 26
2.2. Анализ результатов исследования 33
Выводы 36
Предложения 37
Литература 38
Файлы: 1 файл
НАУЧНАЯ ГАСТРОЭНТЕРИТ.docx
— 82.21 Кб (Скачать файл)Рацион должен состоять из минимального количества продуктов.
Лекарственная терапия должна соответствовать тяжести заболевания.
2. Собственная работа
2.1. Материалы и методы исследования
Научно-исследовательская работа выполнена за период прохождения производственной практики в условиях ветеринарной клиники «Ваш ветеринар», расположенной в городе Новокузнецке.
Изучив документацию за последние 3 года, я проанализировала данные о состоянии здоровья животных, поступавших в клинику «Ваш ветеринар» в данный период, и сделала следующие выводы: большинство животных наблюдалось в клинике с болезнями желудочно-кишечного тракта, что составило 68 %. В 57% случаев это был гастроэнтерит и гепатопатия алиментарного характера.
Для проведения исследований было сформировано две группы животных по 5 голов, поступивших в клинику на начальных стадиях острого гастроэнтерита и на стадии длительного течения заболевания. Диагноз у опытных животных ставился на основании:
анамнестических данных (неправильное кормление, возможность отравления);
клинических признаков (угнетённое состояние, анорексия, рвота, жидкие каловые массы, анемичность видимых слизистых оболочек и конъюнктивы, снижение тургора кожи);
результатов общего и биохимического анализов крови.
У заболевших животных производился забор венозной крови для следующих исследований: содержание гемоглобина, количество эритроцитов и лейкоцитов, СОЭ; определение общего белка, активности аспартатаминотрансферазы (АсАТ) и аланинаминотрансферазы (АлАТ), и содержание гемоглобина, по нижеприведённым методикам. Данные тесты выбраны как показывающие функциональное состояние печени.
Мазок периферической крови для характеристики лейкоцитарной формулы.
Повторный забор крови на общий анализ производился через 5 дней после начала лечения. Повторный биохимический анализ крови рекомендован через 30 дней после курса гепатопротекторов.
Определение
общего белка сыворотки крови, активности
аспартатаминотрансферазы (АсАТ) и аланинаминотрансферазы
(АлАТ) проводились с помощью биохимического анализатора StatFax 3300.
Для определения гемоглобина крови в специальную пипетку набирается кровь до отметки (20 мм/куб), опускают её в пробирку с делением гемоглобинометра Сали, в которую предварительно наливают раствор соляной кислоты до деления 10. Пробирку со смесью крови и соляной кислоты слегка смешивают и оставляют на пять минут. К смеси крови с соляной кислотой после 5-ти минутного её состояния пипеткой добавляют по каплям дистиллированную воду; после каждого добавления воды смесь разменивают до тех пор, пока цвет крови сравняется с цветом стандарта. Уровень гемоглобина определяет цифра деления на пробирке, до которой добавляется вода, пока не получится одинаковая окраска исследуемой жидкости и стандарта.
Определение количества эритроцитов и лейкоцитов
Оборудование и реактивы:
1. смесители (меланжеры) или пробирки для подсчета эритроцитов и лейкоци тов.
2. 3% - раствор NaCl (для разведения эритроцитов) или жидкость Гайема.
3. 3% раствор уксусной кислоты.
4. Счетная камера.
Смесители представляют собой капиллярную пипетку с расширением- ампулой, содержащей бусинку, способствующую смешению крови с разводящей жидкостью. Смесители, предназначенные для подсчета эритроцитов, обладают капилляром более тонкого калибра и более объемистой ампулой на них нанесены метки одна - 0,5 другая - перед входом в ампулу - 1.0, третья - у выхода из ампулы - 101.
При набирании крови до метки 0,5 она окажется разведенной в 200 раз, при набирании до 1,0 - в 100 раз. Для разведения эритроцитов применяют 3% раствор поваренной соли или жидкость Гайема, в которой лучше сохраняется форма эритроцитов. Смеситель для лейкоцитов имеет более широкий просвет капилляра и меньшую по величине ампулу. Нанесены три метки: 0,5 , 1,0 и 11. Это позволяет развести кровь в 10, либо в 20 раз (чаще разводят в 20 Раз). Для разведения лейкоцитов используют 3 - 50% раствор уксусной кислоты. Уксусная кислота растворяет эритроциты, что позволяет вести подсчет только лейкоцитов.
Счетная камера. Для подсчета форменных элементов наиболее часто применяется камера типа Бюркера с выгравированной на ней сеткой Горяева. Счетная камера состоит из толстого предметного стекла с особым углублением. На дне углубления счетной камеры выгравирована сетка, в клетках которой и подсчитываются форменные элементы. По краям углубления имеются возвышения, куда накладывается покровное стекло.
Между нижней поверхностью этого стекла и дном углубления образуется замкнутое пространство, которое и представляет собой счетную камеру. Глубина камеры соответствует 0,1 мм. Счетная камера типа Бюркера разделена пополам глубокой канавкой и имеет на каждой половине сетку Горяева, что позволяет сразу считать 2 капли, не заполняя вновь камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших квадратов (15Х15), 25 из которых разделены на малые, по 16 в каждом; имеются также пустые квадраты, собранные в группы по 4 квадрата. Всего в сетке 100 больших пустых квадратов, собранных в 25 групп (5X5). Каждая сторона маленького квадратика равна 1/20 мм, а так как высота камеры составляет 0,10 мм, то объем равен 1/4000 ммЗ.
Ход исследования:
Для подсчета эритроцитов берут смеситель для эритроцитов, надевают резиновую трубочку, легким насасыванием набирают кровь из укола до метки 0,5. Избыток крови удаляют фильтровальной бумагой, после чего кончик смесителя погружают в приготовленный заранее флакон с 3% раствором поваренной соли или раствором Гайема и насасывают раствор, заполняя всю ампулу до метки 101. Тотчас снимают резиновую трубку, зажимают смеситель по длине между большим и указательным или средним пальцем и встряхивают в течение 3 минут. После этого заполняют счетную камеру, сливают1-2 капли и выпускают последующую каплю на сетку.
Для подсчета лейкоцитов
кровь из места укола набирают до метки
0,5, затем разводят 3% раствором уксусной
кислоты до метки 11. Энергично встряхивают
в течение 3 минут, после чего сливают
1-2 капли и заполняют
счетную камеру. При работе с пробирками
для подсчета эритроцитов,
наливают 4 мл 3% раствора поваренной соли
или жидкости Гайема и в нее выпускают
0,02 мл.крови,
отмеренной пипеткой
от гемометра Сали. Для подсчета белых
кровяных элементов в пробирку наливают
0,4 мл 3 - 5% раствора
уксусной кислоты и
0,02 мл крови. Энергично встряхивают пробирки,
затем в жидкость опускают пипетку из
гемометра Сали и,
набрав содержимое,
заполняют счетную камеру.
Заполнение счетных камер:
Хорошо вымытое и вытертое шлифованное покровное стекло накладывают на выступающие боковые края. Мякотью больших пальцев покровное стекло притирают, двигая вверх и вниз, все время плотно прижимая, пока не появятся, так называемые, Ньютоновы кольца. Перед заполнением камеры вновь энергично встряхивают смесители.выпускают 2 капли на фильтровальную бумагу, а третьей заполняют щелку между камерой и покровным стеклом. Жидкость по капиллярности засасывается между ними и заполняет пространство над сеткой. Жидкость при заполнении камеры не должна затекать в желобки, если это стучится, то ее удаляют фильтровальной бумагой.
Подсчет эритроцитов. Подсчет производят спустя 1-2 минуты (когда эритроциты осядут на дно камеры), пользуясь объективом 40Х и окуляром 7X, либо объективом 8Х и окуляром 15Х.
Чтобы не сбиться со
счета, придерживаются определенной
последовательности
счета: передвигая из квадрата в квадрат
по
горизонтали один ряд
слева направо, следующий - справа налево.
Считают, помимо находящихся внутри квадрата,
все эритроциты, лежащие на двух линиях,
например, на левой и верхней, и пропускают
все лежащие справа и снизу. Считать эритроциты
надо в 5 больших квадратах, т. е. в 80 маленьких.
Чтобы избежать неточности, вследствие не вполне равномерного распределения крови в камере, выбирают для подсчета не 5 рядом лежащих квадратов, а продвигаются по всей сетке.
Количество эритроцитов в 1 ммЗ (искомое) вычисляют следующим образом: единицей счета всегда, при всяком подсчете, в любой сетке служит малый квадрат. Объем его, как было указано, равен 1/4000 мм3. Сосчитав эритроциты в 5 больших квадратах (80 малых квадратов), делят это количество на 80 и умножают на 200 (степень разведения крови) и на 4000 (чтобы получить количествоклеток во всем кубическом миллиметре);практически, следовательно, полученное число умножают на 10000 (прибавляют четыре нуля).
Подсчет лейкоцитов. Для получения достаточно точного результата при подсчете лейкоцитов необходимо сосчитать не менее 100 больших квадратов (=1600 малых). Количество лейкоцитов в 1 мм3 получается следующим образом: число, сосчитанное в3100 больших квадратах, делят на 1600 (приводят к 1 малому квадрату) и умножают на 20 (степень разведения) и на 4000; практически, сокращая постоянные цифры формулы, количество сосчитанных лейкоцитов (при разведении в 20 раз) умножают на 50.
Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ) – неспецифический лабораторный показатель крови, отражающий соотношение фракций белков плазмы; изменение СОЭ может служить косвенным признаком текущего воспалительного или иного патологического процесса. Проба основывается на способности эритроцитов в лишенной возможности свёртывания крови оседать под действием гравитации. В норме величина СОЭ у собак не превышает 2–5 мм/час, а у кошек – 6–10 мм/час.
Принцип метода заключается в следующем. Удельная масса эритроцитов превышает удельную массу плазмы, поэтому они медленно оседают на дно пробирки. Скорость, с которой происходит оседание эритроцитов, в основном определяется степенью их агрегации, то есть их способностью слипаться вместе. Из-за того, что при образовании агрегатов уменьшается отношение площади поверхности частиц к их объёму, сопротивление агрегатов эритроцитов трению оказывается меньше, чем суммарное сопротивление отдельных эритроцитов, поэтому скорость их оседания увеличивается. Агрегация эритроцитов главным образом зависит от их электрических свойств и белкового состава плазмы крови. В норме эритроциты несут отрицательный заряд и отталкиваются друг от друга. Степень агрегации (а значит и СОЭ) повышается при увеличении концентрации в плазме так называемых белков острой фазы – маркеров воспалительного процесса. В первую очередь – фибриногена, C-реактивного белка, церулоплазмина, иммуноглобулинов и других. Напротив, СОЭ снижается при увеличении концентрации альбуминов.
Определение СОЭ проводят методом Панченкова (в капилляре). В методе Панченкова в качестве антикоагулянта используют цитрат натрия. В капилляр набирают 2,5 мкл цитрата и в тот же капилляр добирают 7,5 мкл крови или в заранее раскапаные пробирки с цитратом добавляют 7,5 мкл крови, кровь с цитратом перемешивают в пробирке, снова набирают в капилляр и устанавливают в специальный штатив на 1 час. По методу Вестергрена (в пробирке).
В градуированный на 100 делений капилляр Панченкова набирают до метки «Р» 5%-ый раствор цитрата натрия и переносят его на часовое стекло. Затем в тот же капилляр набирают дважды кровь до метки «К» и оба раза выдувают её на часовое стекло. Кровь, тщательно перемешанную с цитратом натрия, вновь набирают в капилляр до метки «К». Капилляр ставят в штатив строго вертикально. СОЭ учитывают через 1 час, при необходимости через 24 часа и выражают в миллиметрах.
Более ста лет данный лабораторный тест применяется для количественного определения интенсивности разнообразных воспалительных процессов. Так, чаще всего увеличение СОЭ связано с воспалительными процессами, отравлениями, инфекциями, инвазиями, опухолями, гемобластозами, кровопотерей, травмами, оперативными вмешательствами.
Хотя воспаление и является наиболее частой причиной ускорения оседания эритроцитов, увеличение СОЭ также может обусловливаться и другими, в том числе и не всегда патологическими, состояниями [9].
Несмотря на свою неспецифичность определение СОЭ все еще является одним из наиболее популярных лабораторных тестов для установления факта и интенсивности воспалительного процесса.
Эластичность, или упругость, тургор кожи зависит от содержания в ней жидкости — крови в сосудах, лимфы в межтканевых щелях, а также от степени развития подкожной клетчатки и тонуса нервной системы. При дегидратации организма, истощении, недостаточном кровообращении упругость кожи уменьшается.
Эластичность кожи проверяют так: кожу собирают в складку двумя пальцами в области холки. У здоровых животных кожная складка быстро расправляется. Задержка этого процесса до 10... 15 с и более указывает на понижение или потерю эластичности.
Эластичность кожи понижается при профузном поносе, полиурии, рвоте, кровопотерях и коллапсе. По мере улучшения состояния животного эластичность кожи восстанавливается.
- Анализ результатов исследования