Фотоэлектроколориметр
Реферат, 14 Июня 2013, автор: пользователь скрыл имя
Описание работы
Для измерения оптической плотности или светопропускания жидких растворов по отношению к растворителю или стандартному раствору предназначен фотоэлектрический колориметр (ФЭК).
В основу работы этого прибора положен принцип уравнения интенсивности двух световых пучков, проходящих через оптические среды, при помощи переменной щелевой диафрагмы.
Файлы: 1 файл
praki_kaki.docx
— 275.62 Кб (Скачать файл)Активность каталазы выражается каталазным числом, которое представляет собой количество перекиси водорода в миллиграммах, разложенной 1 мл3 крови за 30 минут. Показателем каталазы называют соотношение каталазного числа к количеству миллионов эритроцитов в 1 мкл исследуемой крови.
Ход работы. С помощью микропипетки берут кровь из пальца человека или хвоста/уха экспериментального животного и готовят гемолизат крови, разводя ее в 1000 раз в мерной колбе (0,1 мл в 100 мл дистиллированной воды).
В 2 колбочки или широкие пробирки отмерить по 7 мл дистиллированной воды и по 2 мл 1% раствора пероксида водорода. В опытную колбу/пробирку прилить 1 мл разведенной в 1000 раз крови. Обе колбы/пробирки – опытную и контрольную – оставить на 30 минут при комнатной температуре. По истечении указанного времени в обе пробы добавить по 3 мл 10 % раствора серной кислоты, которая прекращает действие каталазы. Содержимое опытной и контрольной проб оттитровать 0,1 н раствором перманганата калия до слабо-розового цвета.
Расчет. Допустим, что на титрование опытной пробы пошло 4,5 мл 0,1 н раствора КМnО4, а контрольной – 12,6 мл 0,1 н раствора КМnО4. 0,1 н раствора КМnО4 соответствует 1 мл 0,1 н Н2О2, а 1 мл Н2О2 соответствует 1,7 мг Н2О2. Следовательно, в данном случае каталазное число соответствует: (12,6 – 4,5) × 1,7 = 13,77 единиц.
Показатели нормы. Каталазное число крови у людей колеблется в пределах от 11 до 20 единиц. В клинике чаще используется показатель каталазы, который в норме составляет 2-3×10-6.
Клинико-диагностическое значение. Высокая активность каталазы наблюдается при пернициозной и макроцитарной анемии, а также при введении в организм кофеина, ацетоновых тел, алкоголя. Активность каталазы в крови снижается при ряде заболеваний: раке, анемии, туберкулезе и др
16. Количественное
определение содержания
Определение содержания гемоглобина в крови цианметгемоглобиновым методом по Драбкину.
Принцип метода. Гемоглобин окисляют в метгемоглобин (гемиглобин) железосинеродистым калием (красная кровяная соль), образующийся с ацетонциангидрином окрашенный цианметгемоглобин (гемиглобинцианид) определяют колометрически.
Ход работы. В пробирку (опыт) (осторожно!) отмерить 5 мл. трансформирующего раствора (реактив Драпкина), к нему добавить 0,02 мл крови (разведена в 251 раз). В другую пробирку (стандарт) прилить 5 мл реактива Драпкина и 0,02 мл стандартного раствора. Содержимое обеих пробирок перемешать и в течение 30 минут выдержать при комнатной температуре. Измерить экстинцию опытной и стандартной проб на ФЭКэ при длине волны 500-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы (трансформирующий раствор).
Расчет содержания гемоглобина произвести по формуле:
Hb(г/л)=Еоп/Ест ×С × К × 0,01, где
Еоп – экстинкция опытной пробы;
Ест – экстинкция стандартного раствора;
С – концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе (59,75 мг/100мл);
К – коэффициент разведения крови (251);
0,01 – коэффициент пересчета мг/100 мл в г/л.
Сопоставить с нормой содержания у здоровых людей и сделать вывод.
У здоровых людей концентрация гемоглобина колеблется в следующих пределах:
- новорожденные – 210 – 225 г/л;
- дети в возрасте 1 месяца – 145 - 165 г/л;
- дети в возрасте 6 месяцев – 115 - 130 г/л;
- дети в возрасте 1 года – 110 - 120 г/л;
- дети в возрасте 14-15 лет – 130 -150г/л;
- взрослые женщины – 120 - 140 г/л, мужчины – 135 - 160г/л.
Клинико-диагностическое значение определения содержания гемоглобина в крови: снижение содержания гемоглобина в крови наблюдается при анемиях различного генеза, при острых и хронических кровотечениях, некоторых инфекционных заболеваниях; повышение – при сгущении крови, при заболеваниях, связанных с увеличением количества эритроцитов (эритремии) и др.
17. Количественное
определение билирубина в сыворотке
крови по методу Иендрашека.
Количественное определение билирубина в сыворотке крови по методу Иендрашека.
Принцип метода. В основе метода Иендрашека лежит реакция Ван ден Берга, описавшего способность билирубина давать розово-фиолетовое окрашивание с диазореактивом Эрлиха. Интенсивность образующейся окраски прямо пропорциональна концентрации билирубина в растворе. Разрушение билирубин-альбуминового комплекса (свободный, или непрямой билирубин) осуществляется кофеиновым реактивом, который одновременно переводит билирубин в растворимое диссоциированное состояние. Интенсивность образующейся окраски измеряется на ФЭКе при зеленом светофильтре (563 нм), а количество билирубина определяется по калибровочному графику.
Ход работы. В 3 пробирки отмерить указанные в таблице реактивы и колориметрировать через 5 - 10 мин. на ФЭКе в кювете 10 мм против контроля при зеленом светофильтре.
По калибровочному графику определить содержание общего и связанного билирубина. Вычитая из уровня общего билирубина количество прямого, рассчитать содержание непрямого (свободного) билирубина. Сопоставить с нормой содержания у здоровых людей и сделать вывод.
Реактивы |
Пробирки | ||
1-я |
2-я |
3-я | |
Сыворотка крови |
1 мл |
1 мл |
1 мл |
Кофеиновый реактив |
3,5 мл |
3,5 мл |
- |
Диазореактив |
0,5 мл |
- |
0,5 мл |
Физиологический раствор |
- |
0,5 мл |
3,5 мл |
Типы билирубина |
общий |
контроль |
прямой (связанный) |
Нормальное содержание билирубина в крови – 8,5 – 20,5 мкмоль/л; 75% общего билирубина составляет непрямой (свободный), 25% - прямой (связанный) билирубин.
Клинико-диагностическое
значение определения содержания билирубина
в сыворотке крови: определение общего билирубина и его
фракций используется для диагностики
и дифференциальной диагностики желтух
различной этиологии – гемолитической
(надпеченочной), паренхиматозной (гепатоцеллюлярной,
печеночной) и обтурационной (механической,
подпеченочной). При гемолитической желтухе
гипербилирубинемия развивается в основном
за счет непрямого (свободного) билирубина.
При паренхиматозной желтухе происходит
деструкция гепатоцитов и нарушается
экскреция прямого билирубина в желчные
ходы, он попадает в кровь. Кроме того из-за
функциональной несостоятельности гепатоциты
не способны эффективно захватывать из
крови непрямой билирубин и конъюгировать
его. При паренхиматзной желтухе наблюдается
гипербилирубинемия смешанного типа.
При обтурационной желтухе нарушается
эвакуация желчи в двенадцатиперстную
кишку, что приводит к повышению в крови
прямого, а в более поздние сроки болезни
и непрямого билирубина.
18. Пробы
коллоидной устойчивости плазмы крови
Вельтмана и тимоловая
Пробы коллоидоустойчивости белков сыворотки крови.
А. Тимоловая проба
Принцип метода. Метод основан на образовании плохо растворимого глобулино-тимололипидного комплекса при взаимодействии сыворотки крови с тимоло-вероналовым буфером.
Ход работы. К 6 мл тимоло-вероналового буфера (рН 7,6) прибавить 0,1 мл негемолизированной сыворотки крови и через 30 минут отколориметрировать при красном светофильтре в кюветах толщиной 10 мл против тимоло-вероналового буфера. Расчет произвести по калибровочному графику.
В норме интенсивность помутнения колеблется в пределах от 0 до 4 условных единиц.
Б. Проба Вельтмана
Принцип метода. Метод основан на нарушении коллоидоустойчивости белков сыворотки крови в присутствии раствора хлористого кальция при нагревании.
Ход работы. К 0,1 мл негемолизированной сыворотки крови прилить 4,9 мл воды, перемешать и нагреть над пламенем спиртовки до однократного закипания пробы. Охладить смесь и посмотреть ее содержимое на свет. Если в пробирке нет единичных хлопьев коагулированного белка, добавить еще 0,1 мл 0,5% раствора хлористого кальция и вновь прокипятить. Процедуру повторять до тех пор, пока не выпадут хлопья.
В норме коагуляции наступает при добавлении 0,4 - 0,5 мл раствора хлористого кальция.
Клинико-диагностическое. Осадочные пробы широко распространены в клинической практике. Данная группа проб основана на исследовании изменений коллоидной устойчивости белков сыворотки крови при патологических состояниях, сопровождающихся диспротеинемией (воспалительные заболевания, заболевания печени и почек и др.). Лабильность сывороточных белков, определяемая в первую очередь соотношением крупно- и мелкодисперсных фракций (альбумины/глобулины) и снижением коллоидоустойчивости при действии различных денатурирующих агентов, может быть связана с относительным увеличением глобулинов при уменьшении альбуминов. Большое значение имеет и относительное увеличение γ-глобулинов в глобулиновой фракции.